BPC-157 ou TB-500 : comparatif chimique et analytique

Le BPC-157 et le TB-500 sont les deux peptides de recherche les plus demandés en France, et souvent cités ensemble. Chimiquement, ils n’ont pourtant rien en commun : ni origine, ni longueur, ni charge. Ce comparatif réunit les données utiles pour les distinguer, les contrôler et choisir entre les flacons séparés et le mélange.

En bref

	BPC-157	TB-500
Origine de la séquence	Protéine du suc gastrique (« Body Protection Compound »)	Thymosine β4, résidus 17 à 23
Longueur	15 acides aminés	7 acides aminés, N-acétylé
Séquence	Gly-Glu-Pro-Pro-Pro-Gly-Lys-Pro-Ala-Asp-Asp-Ala-Gly-Leu-Val	Ac-Leu-Lys-Lys-Thr-Glu-Thr-Gln
Formule brute	C62H98N16O22	C38H68N10O14
Masse molaire	1 419,6 g/mol	889,0 g/mol
Numéro CAS	137525-51-0	pas de numéro propre vérifié
Charge nette à pH 7 (approx.)	−2	proche de 0
Résidus aromatiques	aucun	aucun
Formats Auptide	5, 10 et 20 mg	5, 10 et 20 mg

Deux origines sans rapport

Le BPC-157 est un pentadécapeptide de synthèse dont la séquence a été tirée d’une protéine plus longue décrite dans le suc gastrique. Il est aussi référencé sous les codes PL 14736 et PL-10. Sa séquence compte quatre prolines, dont trois consécutives (Pro-Pro-Pro), ce qui rigidifie le squelette.

Le TB-500 est un fragment de la thymosine β4, protéine de 43 acides aminés. Il en reprend les résidus 17 à 23, le motif LKKTETQ décrit comme site de liaison à l’actine, avec un acétyle sur la leucine N-terminale. Le détail de la relation entre le fragment et la protéine complète est dans notre article TB-500 et thymosine β4 : fragment ou peptide complet ?.

Une confusion fréquente : le numéro CAS 77591-33-4 affiché par certaines boutiques pour le « TB-500 » est celui de la thymosine β4 complète. Un heptapeptide de 889 g/mol et une protéine de 4 963 g/mol ne peuvent pas partager le même identifiant. Sur nos fiches, un numéro CAS n’est donné que lorsqu’il correspond à la molécule vendue.

Charge, solubilité et mise en solution

À pH neutre, le BPC-157 porte une charge nette d’environ −2 : un glutamate et deux aspartates, contre une seule lysine. Il se dissout bien dans l’eau. Le TB-500 a deux lysines, un glutamate et une extrémité N-terminale acétylée, donc sans charge : sa charge nette est proche de zéro, mais sa séquence courte et polaire le rend lui aussi soluble dans l’eau. Pour les deux, l’eau bactériostatique ou l’eau stérile conviennent ; le point isoélectrique explique pourquoi une séquence proche de la neutralité se dissout parfois plus lentement.

Pour passer d’une concentration en mg/mL à une concentration molaire, il faut la masse molaire : 5 mg/mL correspondent à 3,52 mmol/L de BPC-157 mais à 5,62 mmol/L de TB-500. Le calculateur de concentration fait la conversion pour chaque composé du catalogue.

Contrôle analytique : ce qui change

Détection UV. Aucun des deux peptides ne contient de tryptophane, de tyrosine ou de phénylalanine. Ils n’absorbent donc pratiquement pas à 280 nm : la pureté se mesure à 214 ou 220 nm, longueur d’onde de la liaison peptidique (détection UV à 214 et 280 nm).

Spectrométrie de masse. L’identité se confirme par la masse : on attend un ion [M+H]+ autour de m/z 1 420 et un ion dichargé autour de m/z 711 pour le BPC-157, et un ion [M+H]+ autour de m/z 890 pour le TB-500. Un TB-500 non acétylé apparaîtrait 42 unités plus bas, une erreur de synthèse que la seule pureté HPLC ne révèle pas (spectrométrie de masse).

Impuretés typiques. Pour le BPC-157, les délétions dans le bloc Pro-Pro-Pro et la cyclisation de l’aspartate (Asp-Asp) sont les impuretés à surveiller ; pour le TB-500, l’acétylation incomplète et la désamidation de la glutamine C-terminale (impuretés peptidiques, désamidation).

Flacons séparés ou mélange BPC-157 + TB-500 ?

Le mélange BPC-157 + TB-500 contient les deux peptides lyophilisés ensemble, en parts égales : 10 mg (5 + 5) ou 20 mg (10 + 10). Il simplifie la préparation quand les deux sont utilisés dans le même protocole, mais fige le ratio 1:1 en masse, soit environ 1:1,6 en moles puisque le TB-500 est plus léger.

Les flacons séparés laissent choisir le ratio et contrôler chaque peptide indépendamment. L’analyse d’un mélange demande en effet de séparer et d’identifier chaque composant ; notre article sur l’analyse des mélanges lyophilisés détaille ce qu’un rapport de mélange doit contenir. Les mélanges à trois et quatre composants, GLOW et KLOW, ajoutent le GHK-Cu et le KPV.

Conservation

Les deux peptides se conservent scellés à −20 °C, à l’abri de la lumière. Le BPC-157 ne contient ni méthionine ni cystéine et s’oxyde peu ; le TB-500 non plus. En solution, la règle reste la même : aliquoter et congeler pour limiter les cycles de congélation-décongélation.

Les deux sont vendus exclusivement comme réactifs de recherche in vitro, sans aucune indication d’utilisation.